ATIVIDADES ANTIOXIDANTE E ANTIMICROBIANA EM HIDROLISADOS DE PELE DE RÃ-TOURO

Juliana Aparecida Mirante da Silva; Marina Brito Cunha; Diego de Assunção Justo; Ortência Leocádia Gonzalez da Silva Nunes; Solange Maria Cottica; Tatiana Shioji Tiuman

doi:10.35984/fjh.v3i2.335

Juliana Aparecida Mirante da Silva Universidade Tecnológica Federal do Paraná - Campus Toledo
Marina Brito Cunha Universidade Tecnológica Federal do Paraná - Campus Toledo
Diego de Assunção Justo Universidade Tecnológica Federal do Paraná - Campus Toledo
Ortência Leocádia Gonzalez da Silva Nunes Universidade Tecnológica Federal do Paraná - Campus Toledo
Solange Maria Cottica Docente da Universidade Tecnológica Federal do Paraná – UTFPR, Campus Toledo https://orcid.org/0000-0003-3183-2531
Tatiana Shioji Tiuman Docente da Universidade Tecnológica Federal do Paraná – UTFPR, Campus Toledo

DOI: https://doi.org/10.35984/fjh.v3i2.335

Palavras-chave: Compostos Bioativos, Hidrólise Enzimática, Ultrassom, Peptídeos

Resumo

A indústria e a ciência estudam e desenvolvem produtos a partir de fonte natural para suprir a demanda por moléculas com atividades antioxidante e antimicrobiana. A pele de rã é um subproduto de frigoríficos de abate desse animal e tem sido objeto de estudo na prospecção de peptídeos bioativos oriundos de hidrólise enzimática. No Brasil, a rã-touro (Lithobates catesbeianus) é a única espécie permitida para exploração comercial em ranários para aproveitamento da carne. Este estudo teve por objetivo avaliar o uso do ultrassom em conjunto com a hidrólise enzimática de pele de rã-touro para a produção de peptídeos com atividades antioxidante e antimicrobiana. Os resultados mostraram que os peptídeos liberados pela hidrólise convencional da pele de rã-touro possuem expressiva atividade antioxidante. O uso de um sonicador diminuiu o tempo de hidrólise para 5 min, com a melhor potência de 250 W avaliada pelas análises do DPPH e do FRAP, enquanto que a potência de 100 W foi melhor para a análise do ABTS. Em relação à atividade antimicrobiana, os hidrolisados não apresentaram qualquer resultado na concentração de 20 mg mL^-1, sendo necessário fazer outros estudos com valores maiores de concentração de amostra.

Referências

AFONSO, A. M. Ranicultura se consolida com cadeia produtiva operando em rede interativa. Revista Visão Agrícola, 11, 33-35, 2012.

AYRES et al. Carcass yield and proximate composition of bullfrog (Lithobates catesbeianus). Acta Sci., Anim. Sci. 37, 329-333, 2015. http://doi.org/10.4025/actascianimsci. v37i4.28196.

BARBOSA et al. Structure and function of a novel antioxidant peptide from the skin of tropical frogs. Free Radical Biology and Medicine. 115, 68–79, 2018. http://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2017.11.001.

BENZIE I.; STRAIN J. The Ferric Reducing Ability of Plasma (FRAP) as a measure of ‘‘antioxidant power’’: the FRAP assay. Analytical Biochemistry 239:70-76, 1996. http://doi.org/10.1006/abio.1996.0292.

BOROSKI et al. Antioxidantes princípios e métodos analíticos. Curitiba: Editora Appris, 2015.

BRASIL. Ministério do Meio Ambiente, dos Recursos Hídricos e da Amazônia Legal. Instituto Brasileiro do Meio Ambiente e dos Recursos Naturais Renováveis. Portaria nº 93, de 7 de julho de 1998. Regulamenta a importação e a exportação de espécimes vivos, produtos e subprodutos da fauna silvestre brasileira e da fauna silvestre exótica. Diário Oficial [da] República Federativa do Brasil, Brasília, DF, 8 jul. 1998. Disponível em: http://www.ibama.gov.br/sophia/cnia/legislacao/IBAMA/PT0093-070798.PDF. Acesso em: 03 jan. 2021.

BUTTERFIELD et al. Nutritional approaches to combat oxidative stress in Alzheimer’s diseases. J. Nutr. Biochem. 13, 444-461, 2002. http://doi.org/10.1016/S0955-2863(02)00205-X.

CENTENARO et al. Fractionation of protein hydrolysates of fish and chicken using membrane ultrafiltration: Investigation of antioxidant activity. Applied Biochemistry and Biotechnology, 172, 2877–2893, 2014. http://doi.org/10.1007/s12010-014-0732-6.

CHAPMAN, J.; ISMAIL, A. E.; DINU, C. Z. Industrial applications of enzymes: Recent advances, techniques, and outlooks. Catalysts, 8(6), 20–29, 2018. http://doi.org/10.3390/catal8060238.

CLARKE, B.T. The natural history of amphibian skin secretions, their normal functioning and potential medical applications. Biol. Rev. 72, 365–379, 1997. http://doi.org/10.1017/s0006323197005045.

CUNHA, E. R.; DELARIVA, R. L. Introdução da rã-touro, Linthobates catesbeianus (SHAW 1802): Uma revisão. SaBios: Rev. Saúde e Biol. 4, 2, 34-36, 2009.

FAO. Cultured Aquatic Species Information Programme: Rana catesbeiana, Fisheries and Aquaculture Department. Retrieved 2019-03-12, 2019.

FLEMING, A. On the Antibacterial Action of Cultures of a Penicillium, with Special Reference to Their Use in the Isolation of B. influenzae. Clinical Infectious Diseases. 2, 129–139, 1980. http://doi.org/10.1093/clinids/2.1.129.

GELATTI et al. Staphylococcus aureus resistentes à meticilina: disseminação emergente na comunidade. Anais Brasileiros de Dermatologia, 84, 5, 501-506, 2009. http://doi.org/10.1590/S0365-05962009000500009.

GIRGIH et al. Evaluation of the in vitro antioxidant properties of a cod (Gadus morhua) protein hydrolysate and peptide fractions. Food Chemistry, 173, 652–659, 2015. http://doi.org/10.1016/j.foodchem.2014.10.079.

GOMES et al. Bioactive molecules from amphibian skin: Their biological activities with reference to therapeutic potentials for possible drug development. Indian Journal of Experimental Biology. 45, 579-593, 2007.

GOULD, D. Effective strategies for prevention and control of Gram-negative infections. Nursing Standard, Londres, 23, 48, 42-46, 2009. http://doi.org/10.7748/ns2009.08.23.48.42.c7204.

GOUVEIA, S. da S.; LIMA, A. A. Relação entre espécies reativas de oxigênio e a promoção carcinogênica. Brazilian Journal of Surgery and Clinical Research, 20, 3, 174-179, 2017.

HERNÁNDEZ-HERNÁNDEZ, H. M.; MORENO-VILET, L.; VILLANUEVA-RODRÍGUEZ, S. J. Current status of emerging food processing technologies in Latin America: Novel non-thermal processing. Innovative Food Science and Emerging Technologies, 58, 1-16, 2019. http://doi.org/10.1016/j.ifset.2019.102233.

HUANG et al. In vitro evaluation of antioxidant activities and inhibition of ACE activity by collagenase-treated hydrolysate derived from bullfrog skin. Journal of Food and Drug Analysis 19, 301-308, 2011. http://doi.org/10.38212/2224-6614.2191.

ISLAS-RODRIGUEZ et al. Esculentin 1–21: a linear antimicrobial peptide from frog skin with inhibitory effect on bovine mastitis-causing bactéria. J. Pept. Sci. 15: 607–614, 2009. http://doi.org/10.1002/psc.1148.

KARNJANAPRATUM, S.; BENJAKUL, S. Asian bullfrog (Rana tigerina) skin gelatin extracted by ultrasound-assited process: Characteristics and in-vitro cytotoxicity. International Journal of Biological Macromolecules, 148, 391-400, 2020. http://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2020.01.150.

LIMA et al. Staphylococcus aureus e as infecções hospitalares – Revisão de literatura. Uningá Review, 21, 1, 32-39, 2015.

NCCLS. Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically; Approved Standard - Sixth Edition. NCCLS document M7-A6 [ISBN 1-56238-486-4]. NCCLS, 940 West Valley Road, Suite 1400, Wayne, Pennsylvania 19087-1898 USA, 2003.

NWACHUKWU, I. D.; ALUKO, R. E. Structural and functional properties of food protein-derived antioxidant peptides. J Food Biochem e12761, 2019. DOI: 10.1111/jfbc.12761.

OGEDA, T. L.; PETRI, D. F. S. Hidrólise Enzimática de Biomassa. Química Nova. Vol 33 no. 7 São Paulo; 2010. http://doi.org/10.1590/S0100-40422010000700023.

OLIVEIRA et al. Concentração Mínima Inibitória (CMI) de antibióticos para oito estirpes de bactérias diazotróficas da Coleção de Culturas da Embrapa Agrobiologia. Seropédica: Embrapa Agrobiologia, 2009. 16 p. (Embrapa Agrobiologia. Boletim de Pesquisa & Desenvolvimento, 49). ISSN 1676-6709.

PIRES, C.; CLEMENTE, T.; BATISTA, I. Functional and antioxidative properties of protein hydrolysates from Cape hake by-products prepared by three different methodologies. J Sci Food Agric 93(4):771-780, 2012. http://doi.org/10.1002/jsfa.5796.

QIAN et al. Isolation and characterization of collagen from skin of bullfrog, Rana catesbeiana Shaw. J Fish Sci Technol 10, 2, 53-59, 2007. http://doi.org/10.5657/fas.2007.10.2.053.

RABÊLO et al. Atividade antioxidante e antimicrobiana de extratos de atemoia (Annona cherimola Mill. x A. squamosa L.). Revista Brasileira de Fruticultura, 36(spe1), 265–271, 2014. doi: http://doi.org/10.1590/s0100-29452014000500031.

RAMALHO, V. C.; JORGE, N. Antioxidantes utilizados em óleos, gorduras e alimentos gordurosos. Quim. Nova, v. 29, n. 4, p. 475-760. Pryor, W.A.; Ann, N.Y. (1982). Free radical biology: xenobiotics, cancer, and aging. Acad. Sci. 393, 1–22, 2006. DOI: http://doi.org/10.1590/S0100-40422006000400023.

ROLLINS-SMITH et al. Antimicrobial Peptide Defenses in Amphibian Skin. Integr. Comp. Biol., 45, 137–142, 2005.http://doi.org/10.1093/icb/45.1.137.

ROMDHANE et al. Optimization of polysaccharides extraction from watermelon rinds: structure, functional and biological activities. Food Chem. 216, 355–364, 2017. http://doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.08.056.

SINDHI et al. Potential applications of antioxidants - A review. Journal of Pharmacy Research 7, 828 – 835, 2013. http://doi.org/10.1016/j.jopr.2013.10.001.

SOUZA et al. Escherichia coli enteropatogênica: uma categoria diarreiogênica versátil. Rev Pan Amaz Saúde, 7, 2, 79-91, 2016. http://doi.org/10.5123/S2176-62232016000200010.

TÉLLEZ-MORALES, J. A.; HERNÁNDEZ-SANTO, B.; RODRÍGUEZ-MIRANDA, J. Effect of ultrasound on the techno-functional properties of food components/ingredients: A review. Ultrasonics – Sonochemistry, 61, 104787, 2020. http://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2019.104787.

TRIPATHI, K. D. Antimicrobial Drugs: General Considerations. In: Essentials of Medical Pharmacology, 7th ed. New Delhi, India: Jaypee Brothers Medical Publishers., 2013. Section 12, Cap. 49 p.688-703.

WANG et al. Ultrasound promotes enzymatic reactions by acting on diﬀerent targets: Enzymes, substrates and enzymatic reaction systems. International Journal of Biological Macromolecules, 119, 453–461, 2018. doi: http://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.07.133.

WANG, X.; MAJZOOBI, M.; FARAHNAKY, A. Ultrasound-assisted modification of functional properties and biological activity of biopolymers: A review. Ultrasonics - Sonochemistry 65, 105057, 2020. https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2020.105057.

ZOHRAB et al. Biological Properties, Current Applications and Potential Therapeautic Applications of Brevinin Peptide Superfamily. Int J Pept Res Ther 25, 39–48, 2019. http://doi.org/10.1007/s10989-018-9723-8.